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Cette étude démontre que des biocapteurs bactériens ingénierés permettent de cartographier in situ la disponibilité spatialement variable de l'acide sialique dans l'intestin enflammé, révélant ainsi des dynamiques métaboliques hôte-microbiome complexes et guidant des stratégies thérapeutiques.
Les auteurs ont développé un système Cre-lox régulé et titrable chez *Escherichia coli* permettant des recombinaisons génomiques à faible taux pour enregistrer de manière stable des expositions à l'arsénite en conditions anoxiques, offrant ainsi un outil polyvalent pour la biosurveillance environnementale et la biologie synthétique.
Les auteurs présentent un système de réplication orthogonale amélioré, EcORep, capable d'atteindre des taux de mutation proches de la limite biologique, et démontrent son efficacité en l'adaptant à *Vibrio natriegens* pour réaliser l'évolution rapide de nouvelles fonctions génétiques en seulement 16 heures.
Cet article présente CyanOperon, une extension du kit CyanoGate MoClo permettant l'assemblage modulaire et standardisé d'opérons synthétiques jusqu'à six gènes pour une expression contrôlée chez *Escherichia coli* et *Synechocystis* sp. PCC 6803, comme démontré par la production de violacéine et l'analyse de bibliothèques de RBS.
Les auteurs ont développé des sialogranules synthétiques à haute avidité, capables de détecter les lectines et d'inhiber l'entrée du virus de la grippe en servant de leurres antiviraux programmables.
Les auteurs ont développé une formulation optimisée d'expression génique sans cellule, combinant une surexpression de l'ARN polymérase T7 et une réduction de la concentration en ribosomes, qui permet d'augmenter d'environ 10 fois le rendement de production de protéines à partir d'une seule copie d'ADN dans des microgouttelettes, rendant ainsi possible le criblage fonctionnel robuste dans des environnements à faible concentration d'ADN.
Les auteurs présentent les GRIPs, une plateforme évolutive et versatile utilisant des inhibiteurs d'effecteurs abondants et des poignées de transfert de groupe pour créer des chimères modifiant les modifications post-traductionnelles, offrant ainsi de nouvelles fonctionnalités aux médicaments et permettant une édition précise des protéines avec une spécificité validée par protéomique globale.
Les auteurs ont développé CODE-HB, une plateforme d'évolution dirigée continue dans les cellules B humaines qui réutilise les mécanismes d'hypermutation somatique pour faire évoluer des protéines et des anticorps neutralisants sans virus ni compromission de la fitness génomique.